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EST. 1989 · CLASS 100,000 CLEANROOM EN
LOW BINDING · 醋酸纤维薄膜电泳标配

醋酸纤维素膜
Cellulose Acetate

When sample loss is unacceptable.

CA 膜是业内蛋白吸附最低(仅 26.8 μg/cm² BSA)的滤膜之一,专为最大化样品回收设计。低静电、高强度、可反复灭菌不影响泡点完整性;最高耐温达 180℃;含有所有膜中最低的水溶性物质(仅 0.1 wt%)。也是血清蛋白电泳分离与同工酶分析的经典支持介质。

26.8μg/cm²
BSA BINDING
极低蛋白吸附
180
MAX TEMP
最高操作温度
0.1wt%
EXTRACTABLES
水溶性可提取物
5条带
SERUM PROTEIN
血清蛋白分辨
01 / Key Features

CA 膜五大特性

与 MCE 膜相比,CA 膜在低分子醇耐受性、耐热性、低蛋白结合三个维度具有显著优势。

01

低静电 · 高强度

膜表面低静电特性减少样品吸附损失;醋酸纤维素的机械强度优于纯硝酸纤维素膜,操作过程中不易撕裂。

02

反复灭菌不变形

可承受多次高温高压灭菌(121–180℃),不影响膜的泡点值与完整性。适合需要重复使用的工艺过滤场景。

03

极致清洁性

所有膜材料中含最低比例(0.1 wt%)的水溶性物质,几乎不向滤液中释放可提取物,适合超纯样品过滤与痕量分析。

04

耐低分子量醇溶剂

相比 MCE 膜,CA 膜对甲醇、乙醇、异丙醇等低分子量醇类溶剂的耐受性更强,是醇溶液过滤的优选。

05

低蛋白结合(业内最低档之一)

BSA 吸附量仅 26.8 μg/cm²,远低于 MCE 膜的 100.8 μg/cm²。在革兰氏阳性菌回收、酶溶液过滤、受体结合研究、诊断细胞学等需要"最大化样品保留"的场景中,CA 膜是不可替代的选择。

规格参数 / Cellulose Acetate Specs

Pore SizePore (μm) Bubble Point 流量 PorosityPorosity % ThicknessThickness μm
MPapsi Water
mL/min·cm²
Air
L/min·cm²
0.20≥0.25≥37.116266100
0.45≥0.17≥25.935468100
0.80≥0.068≥10.01601472100
3.00≥0.034≥5.05005478100
关键参数 · 湿润时间 < 3 秒 · 折射率 = 1.47 · 最高操作温度 = 180℃ · 灰分 1.5–3.5 μg/cm²。注:应在装入过滤器和高压灭菌之前进行预湿润处理。
02 / Microstructure

CA 膜
微观孔结构

扫描电子显微镜(SEM)下的真实形貌。可见 致密的孔结构与圆滑表面——这是 CA 膜极低蛋白吸附特性的微观基础,能最大限度保留珍贵样品。

CA 醋酸纤维素膜电镜 X1000 放大
SEM · X1,000 · 10 μm
Cellulose Acetate Membrane

醋酸纤维素膜
关键性能指标

  • PROTEIN BINDING
    2 – 10 μg/cm² · 极低蛋白吸附
  • SAMPLE RECOVERY
    ≥ 95% · 适合珍贵样品
  • EXTRACTABLES
    ≤ 0.1 wt% · 超低萃取物
  • THERMAL
    180℃ 可耐受 · 适合湿热灭菌
  • CLINICAL
    CAE 蛋白电泳金标准载体
说明 · 电镜图为我司产品真实样品于实验室扫描电子显微镜下拍摄,放大率与标尺均见图角标。微观结构是滤膜性能的根本,直接决定截留效率、流通量与机械强度。
SPECIAL APPLICATION

醋酸纤维素薄膜
电泳实验

醋酸纤维素薄膜电泳(CAE,Cellulose Acetate Electrophoresis)是医学和临床检验的常规技术,已广泛用于血清蛋白、脂蛋白、血红蛋白、糖蛋白、多肽、核酸、同工酶等生物大分子的分析检测。

实验原理

以醋酸纤维素薄膜(厚度 0.1–0.15 mm)作为支持物,将蛋白样品在电场中分离。各种蛋白质由于氨基酸组成、分子量、等电点及形状不同,在 pH 8.6 的巴比妥缓冲体系中迁移速度不同。

以正常人血清为例,电泳染色后可分辨出 5 条清晰区带——按迁移速度从快到慢依次为:白蛋白、α₁-球蛋白、α₂-球蛋白、β-球蛋白、γ-球蛋白。这些区带洗脱后可进行光吸收扫描,自动绘出区带吸收峰及相对百分比。

CAE 优势
操作简单、快速、廉价、用样量少、应用范围广、分离清晰、无吸附现象。虽然分辨力略低于聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE),但对于临床血清蛋白分型、同工酶筛查等常规分析,CAE 仍然是首选支持介质。
CA Membrane · Serum Protein Bands 白蛋白 Albumin ~58% α₁ α1-glob. ~3% α₂ α2-glob. ~7% β β-glob. ~10% γ γ-glob. ~17% — 阴极 (cathode) + 阳极 (anode) → MIGRATION SPEED ↗

标准操作流程 / Standard 7-Step Protocol

01
浸泡

取 CA 薄膜(2×8 cm 或 8×12 cm),平放在巴比妥缓冲液(pH 8.6)中浸泡约 30 分钟。识别光泽面与无光泽面,做记号。

02
点样

将浸透的薄膜取出,用滤纸吸去多余缓冲液。用点样器在距阴极端 2 cm 处划线点样(血清等),确保点样均匀整齐。

03
平衡

将薄膜架在电泳槽支架上,无光泽面朝下,两端搭接滤纸桥连通缓冲液。点样端朝阴极。

04
电泳

接通电源,电压 110–160 V,电流 0.4–0.6 mA/cm 膜宽,电泳 45–60 分钟,至各蛋白带分离清晰。

05
染色

关电源后取出薄膜,置于 0.5% 氨基黑 10B 染色液(含甲醇 / 冰醋酸)中浸染 5–10 分钟。

06
漂洗

放入漂洗液(95% 乙醇 / 冰醋酸 / 水)中,每 10 分钟换液一次,重复 3–4 次至背景蓝色脱尽。

07
定量

剪下各色带,用 0.4 mol/L NaOH 洗脱 30 分钟,于 620 nm 比色测定,计算各蛋白百分比;或直接用扫描仪定量。

试剂与耗材清单 / Reagents & Consumables

REAGENTS · 试剂
巴比妥缓冲液 pH 8.6巴比妥 1.66 g + 巴比妥钠 12.76 g / 1 L
染色液氨基黑 10B 0.5 g + 甲醇 50 ml + 冰醋酸 10 ml
漂洗液95% 乙醇 45 ml + 冰醋酸 5 ml + 水 50 ml
透明液冰醋酸 25 ml + 无水乙醇 75 ml
CONSUMABLES · 耗材
CA 薄膜XYCAM0011 (2×8cm) · XYCAM0012 (8×12cm)
点样器市售或自制
电泳仪常压电泳仪 / DYY-6C
培养皿直径 9–10 cm
分光光度计722 型 · 620 nm
应用范围 · 血清蛋白分型 · 血红蛋白分析 · 脂蛋白电泳 · 糖蛋白分析 · 甲胎蛋白(AFP)检测 · 类固醇激素分析 · 同工酶电泳(LDH、CK 等)。已经成为临床医学常规检验项目。
02 / Order Codes

OrderCat. No.

CA 膜提供圆片(一般过滤)与片材(电泳实验)两类规格。1.0 μm 以上孔径带无纺布背衬。

圆片膜(一般过滤用)

孔径 μm47 mm50片/盒50 mm50片/盒90 mm50片/盒
0.20XYCAM0001XYCAM0004XYCAM0007
0.45XYCAM0002XYCAM0005XYCAM0008
0.80XYCAM0003XYCAM0006XYCAM0009

片材(电泳实验专用)

孔径 μm2 cm × 8 cm50片/盒8 cm × 12 cm50片/盒
0.45XYCAM0011XYCAM0012

特殊订单可提供其他尺寸。可定制其他孔径(1.0 μm 以上孔径带无纺布背衬)。

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销售热线 021-69968272 · 邮箱 453940@qq.com

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